Definición de las condiciones de temperatura y almacenamiento adecuadas en la detección de ADN de Leishmania por PCR en flebotominos.

For epidemiological studies and control programs of leishmaniasis, taxonomic identification of the etiologic agent of the disease in the insect vector is of critical importance. The implementation of molecular techniques such as the polymerase chain reaction (PCR) has permitted great advances in the efficacy and sensitivity of parasite identification. Previously, these investigations involved labor-intensive dissections and required expert personnel. The present work evaluates the effects of storage methods of phlebotomine samples in the optimization of PCR identification of Leishmania. Females of Lutzomyia longipalpis, from the colony of the Instituto Nacional de Salud, were experimentally infected with Leishmania chagasi (= L. infantum), from the upper Magdalena Valley (Quipile, Cundinamarca, Colombia). The infected insects were preserved in three solutions: 100% ethanol, 70% ethanol, and TE; subsamples of each class were stored at -80 degrees C, -20 degrees C and room temperature. To determine infection rates, samples were dissected and screened microscopically. Chelex 100 was used for extraction of total Leishmania DNA. For PCR amplification, the kinetoplastic minicircle DNA primers OL1 and OL2 of Leishmania were used, and the products were visualized by electrophoresis in 1% agarose gels. For each of the 3 storage conditions, amplifications were successful, producing a approximately 120 base pair product unique to Leishmania. The results demonstrated the advantage of PCR as a routine screening method for detecting infected flies in endemic foci of visceral leishmaniasis. Since storage method did not affect PCR amplification success, the most cost effective method -70% ethanol at room temperature--is the option recommended for storing entomological samples in vector incrimination studies.Para estudios epidemiológicos y programas de control de las leishmaniasis es importante la determinación taxonómica del insecto vector y del agente etiológico causante de esta enfermedad. Por su eficacia y sensibilidad, la utilización de técnicas moleculares, como la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) ha permitido avances en entomología médica. La metodología tradicional usada para la búsqueda de infección en los flebótomos es un método dispendioso que requiere mucho tiempo y capacitación para emitir un diagnóstico acertado. En el presente trabajo se evaluaron las condiciones y prácticas adecuadas para el almacenamiento de flebótomos con el propósito de aplicar la PCR. Hembras de Lutzomyia longipalpis de la colonia del Instituto Nacional de Salud se infectaron experimentalmente con una cepa de Leishmania chagasi del valle alto del río Magdalena (Quipile, Cundinamarca). Los insectos infectados se preservaron en tres soluciones: etanol al 100%, etanol al 70% y en buffer Tris- EDTA (TE); submuestras de cada una se almacenaron a -80 °C, -20 °C y a temperatura ambiente. Para determinar los porcentajes de infección, algunas de las hembras se disecaron para buscar las formas flageladas al microscopio. La extracción del KADN se realizó con Chelex 100. Para la amplificación se utilizaron los iniciadores OL1 y OL2 de Leishmania con electroforesis en geles de agarosa al 1%. En cada una de las condiciones descritas se logró la amplificación de un fragmento de »120 pb, correspondiente a Leishmania spp. Estos resultados muestran la ventaja de incorporar como técnica de rutina la PCR para detectar flebótomos infectados de zonas endémicas de leishmaniasis visceral. Por costo-efectividad, se concluyó que las muestras entomológicas para estudios de incriminación vectorial utilizando la PCR, se pueden preservar a temperatura ambiente en etanol al 70%